FastCut AciI 

產(chǎn)品簡介：

FastCut快速內(nèi)切酶是一系列經(jīng)過基因工程重組的快速限制性內(nèi)切酶，適用于質(zhì)粒 DNA、PCR 產(chǎn)物或基因組 DNA 等的快速酶切。所有 FastCut快速內(nèi)切酶在通用的 FastCut或 FastCut Color Buffer 中都具有優(yōu)良的活性，能夠在 5~15 分鐘內(nèi)完成酶切。此外去磷酸化、連接試劑在FastCut Buffer中均具有100% 活性，支持一管化反應，提升“酶切 - 修飾 - 連接”的體驗。

FastCut Color Buffer包括紅色和黃色示蹤染料，可將產(chǎn)物直接用于凝膠電泳。FastCut Color Buffer 的紅色染料與2500 bp 雙鏈DNA片段在 1% 瓊脂糖凝膠中遷移速率接近；黃色染料與10 bp雙鏈DNA片段在 1% 瓊脂糖凝膠中遷移速率接近。

識別位點：CCGC

5'...C ↓ C G C...3'
3'...G G C ↑ G...5'

同裂酶：BspACI, SsiI

注：同裂酶對于不同的甲基化修飾可能具有不同敏感性。

產(chǎn)品組成：

保存條件: 

-20℃保存，2年有效。

建議反應條件：

1× FastCut 緩沖液；

37℃溫育；

參照“DNA 快速酶切流程”配制反應體系。

失活條件：

80℃溫育20 min。

功能活性檢測：

37℃下，在20 μl通用FastCut反應體系中，1 μl FastCut AciI能夠在15 min內(nèi)完全消化1 μg λDNA。

超長時間溫育檢測：

37℃下，在20 μl通用FastCut反應體系中，將1 μl FastCut AciI與1 μg λDNA 共同溫育3 h，未檢測到其他核酸酶污染或星號活性引起的底物非特異性降解。更長時間酶切可能出現(xiàn)星號活性。

酶切-連接-再酶切檢測：

37℃下，使用10倍酶量的FastCut AciI消化DNA底物，回收酶切產(chǎn)物，在22℃下使用T4 DNA Ligase (Fast)可以將超過95%的酶切產(chǎn)物重新連接。將連接產(chǎn)物再次回收后，使用相同的內(nèi)切酶可以重新切開約50%以上的連接產(chǎn)物。

使用方法：

1. DNA快速酶切流程

① 在冰上按如下建議的加樣順序配制反應體系：

a.本體系適用于經(jīng)過純化的PCR產(chǎn)物酶切。未純化的PCR產(chǎn)物具備一定的離子強度，10× FastCut Buffer 加入量可適當減少至2 μl。但由于DNA聚合酶同時具有外切酶活性，會影響酶切產(chǎn)物，因此如下一步需進行克隆等操作，建議酶切前對PCR產(chǎn)物進行純化。

② 輕柔吸打或輕彈管壁以混勻（切勿渦旋），然后瞬時離心以收集掛壁液滴；

③ 37℃溫育15 min（質(zhì)粒），或15~30 min（PCR產(chǎn)物），或30~60 min（基因組DNA）； ④ 80℃溫育20 min即可使酶失活，停止反應（可選）；

⑤ 如果使用FastCut Color Buffer進行酶切反應，得到的產(chǎn)物可以直接進行上樣電泳。

2. 雙酶切或多酶切

① 每種快速內(nèi)切酶的用量為1 μl，并根據(jù)需要適當擴大反應體系；

② 所有快速內(nèi)切酶的體積總和不得超過總反應體系的1/10；

③ 如果所用的幾種快速內(nèi)切酶的最適反應溫度不同，應先以最適溫度低的酶開始酶切，再添加最適溫度較高的酶，在其最適反應溫度下進行酶切反應。

3. 適用于質(zhì)粒的擴大反應體系

注：如果總反應體系大于20 μl，應適當增加溫育時間，盡量使用水浴、金屬浴或沙浴。

不同DNA中的酶切位點數(shù)量

甲基化修飾影響

在不同反應緩沖液中的活性

注：活性數(shù)據(jù)來自限制酶標準反應體系下的檢測。

注意事項：

為了您的安全和健康，請穿實驗服并戴一次性手套操作。